前沿概览 | 化学修饰在细胞外囊泡表面功能化中的应用
细胞外囊泡表面主要由细胞膜磷脂层及功能性膜蛋白组成,不同供体来源的细胞外囊泡其膜组成存在一定差异,这也同时限制了细胞外囊泡的功能及应用。利用生物、物理及化学等多种手段对细胞外囊泡膜表面进行功能化改造修饰,可赋予其独特的靶向特性及功能特性。其中通过化学反应方式对细胞外囊泡表面进行功能化修饰改造是一类特异性强、修饰效率高且便于批量化生产的高效改性方式。依据不同反应原理,化学修饰方式可主要分为共价键修饰及非共价键修饰(图1)。根据使用场景及修饰目的,可灵活多样地选择修饰方式,将修饰分子连接至细胞外囊泡表面。
图1. 细胞外囊泡表面化学修饰方式示意图
共价键表面改造
细胞外囊泡膜表面存在着多种膜蛋白,如四跨膜蛋白(CD9,CD63,CD81),Lamp2b及膜联蛋白等,这使其表面存在着大量可反应的功能化基团,如羧基(-COOH),氨基(-NH2)及巯基(-SH)等2。这些基团均可通过温和高效的反应方式同功能性修饰基团进行共价键合反应。
利用EDC/NHS偶联反应,可将羧基同氨基共价结合形成酰胺基团。此种反应方式针对伯氨基团及羧基进行无臂化键合,直接形成酰胺键,是蛋白质偶联反应中常用反应方式之一。Qi等使用表面带有羧基的直径为10 nm的超顺磁纳米粒子,利用EDC/NHS缩合偶联转铁蛋白分子至纳米粒子表面,形成带有转铁蛋白分子的超顺子纳米粒子3。之后将其同网织红细胞来源的细胞外囊泡进行共培养,利用细胞外囊泡表面带有的转铁蛋白受体,将超顺磁纳米粒子连接至细胞外囊泡表面,用于肿瘤诊断治疗。Zhang等通过巯基-马来酰亚胺加成反应,将整合素α3β1结合八肽cNGQGEQc共价结合至连接分子Maleimide-PEG2000-cholesterol一端,将cholesterol端插入到细胞外囊泡磷脂层中,从而将靶向肽结合到细胞外囊泡表面4。针对非小细胞肺癌细胞过表达整合素α3β1这一病理特性,靶向性递送包载有西贝素的细胞外囊泡至肿瘤组织进行抑癌治疗。
利用膜表面蛋白质分子中的氨基及羧基残基进行化学反应除以上偶联反应外,还有一大类为生物正交反应。相比于传统的偶联反应,生物正交反应效率及选择性更高,且毒副作用较小,反应条件更为温和,特别是无Cu催化的点击化学偶联方式更为蛋白质分子表面修饰提供了更温和高效的反应途径。生物正交反应指能够在活体细胞或组织中,在不干扰生物自身生化反应条件下可进行的化学反应5。在生物正交反应中,点击化学(click chemistry)因其易于操作,较高的反应特异性及反应效率,副反应较少及较低的生物毒性,成为化学修饰改性的重要手段。通过点击化学反应不仅可以对膜蛋白分子的功能基团进行修饰改性,还能将多种标记分子(如荧光探针,辐射标记物等)连接到靶点细胞以便于后续追踪治疗。
经典的点击化学反应是通过Cu(I)催化叠氮化物-炔烃的环加成反应。Anchordoquy等首先利用EDC/NHS偶联反应将含炔基的4-戊烯酸同细胞外囊泡膜表面氨基结合,形成带有炔基的细胞外囊泡。之后,在铜催化下,将带有叠氮基团的荧光分子Azide-Fluor 545通过点击化学反应方式标记至细胞外囊泡表面(图2)。通过此种此种方式修饰细胞外囊泡,并未对其尺寸、结构及功能等产生影响,表明这是一种温和高效的表面修饰手段。点击化学反应相比于传统偶联反应有着诸多优势,合成步骤简单,反应效率高且耗时较少,相比于复杂的生物工程改造费用更为低廉。最重要的是,在生物大分子中不存在非芳香环类双键,通过点击化学反应可避免多种错误位点修饰导致的副反应,减少对生命体功能性影响。但铜催化的点击化学反应仍存在一定缺陷,主要是由于铜盐的存在所导致的细胞毒性及神经系统损伤,并且增加了后续分离纯化的难度。基于这一现状,无铜催化点击化学应运而生,用于克服以上问题。
图2. 通过叠氮-炔基点击反应将荧光分子Azide-Fluor 545结合至细胞外囊泡表面。
无Cu催化的点击化学反应主要为带有环辛炔基团化合物同叠氮化物发生环加成形成三唑环结构的反应过程7。此种反应过程无需加入Cu (I)催化剂,反应条件温和,反应特异性及反应活性较高,且副反应较少。较为常用的环辛炔基团化合物为二苄基环辛炔 (DBCO),其对叠氮化物具有出色的反应活性及较高的反应特异性,并且具有良好的生物相容性,广泛应用于生物功能化修饰。
Gao等通过两步修饰将环状多肽接枝到细胞外囊泡表面8。选用连接分子DBCO-Sulfo-NHS酯,将NHS酯端其同细胞外囊泡表面膜蛋白的氨基进行结合,之后将带有叠氮基团的多肽分子同表面带有DBCO的细胞外囊泡进行反应,从而形成外表面修饰有环状多肽的细胞外囊泡。通过共培养及梯度离心等处理过程将抗炎药物姜黄素包裹入细胞外囊泡中,利用环状多肽靶向缺血性组织细胞表面整合素特性,用于治疗缺血性脑中风。Khuloud等为考察胰腺癌细胞对不同供体细胞来源的细胞外囊泡的摄取差异,选取连接分子DBCO-NHS,将带有叠氮基团的荧光分子Alexa fluor@ 488 azide标记到细胞外囊泡表面,从而定量考察胰腺癌细胞对各种细胞外囊泡的摄取情况,并利用荷瘤小鼠模型考察了胰腺癌小鼠对不同来源细胞外囊泡体内生物分布情况的差异,为后续选择适合的细胞外囊泡用于治疗胰腺癌提供了参考依据(图3)。
图3. 利用DBCO-NHS制备荧光标记细胞外囊泡示意。
基于DBCO类化合物的无铜催化点击化学,可高效特异性完成生物正交反应,是特异性表面工程化修饰的强力手段之一。但仍存在问题,此种反应方式存在着一定的浓度依赖性,在较低浓度条件下(<5μM)反应动力学缓慢,反应进程放缓。为克服这一限制,基于四嗪环基团(Tz)及反式环辛烯(TCO)的环加成反应被用于生物正交反应。Sun等开发了一种基于点击化学反应的微流控检测芯片,用于肝癌早期诊断(图4)。通过将带有TCO基团的三种抗体同肝细胞癌(HCC)来源的细胞外囊泡进行共孵育,形成带有TCO基团的细胞外囊泡。将带有Tz基团及二硫基团的硅氧偶联剂对芯片中的纳米线表面进行修饰,当带有TCO基团的细胞外囊泡通过芯片上的纳米线时,同纳米线表面的Tz发生点击化学反应,从而将细胞外囊泡固定到纳米线上,再加入二硫键还原剂DTT将二硫键还原为巯基,从而将固定的细胞外囊泡释放,然后通过对细胞外囊泡进行PCR定量检测,从而确定带有HCC特异性抗体的细胞外囊泡数量,进行对HCC进行早期诊断。
图4. 基于点击化学反应开发的EV Click Chip系统示意图。
基于共价键合方式进行细胞外囊泡膜表面功能化修饰具有诸多优势,但也存在着固有缺陷。由于功能性反应位点一般存在于膜蛋白上,因此随着反应修饰位点数量的增加,必然会影响细胞外囊泡的膜蛋白的生物功能,过量的修饰改性可能会导致细胞外囊泡丧失其生物功能或发生变性聚集。因此,使用共价键方式对细胞外囊泡表面进行修饰改造时应注意修饰位点数量,并防止由修饰改性引发对细胞外囊泡结构及功能完整性的影响。
非共价键表面改造
非共价键修饰主要基于弱相互作用力对细胞外囊泡表面进行修饰改性,包括静电相互作用及疏水相互作用等11。相较于共价键修饰方式,非共价键修饰过程更易于操作,并且无需加入化学试剂,能够更好地保护各种生物分子的结构及功能完整性。
由于细胞外囊泡膜主要由磷脂层组成,因此,带有功能基团的磷脂分子结合物可利用疏水相互作用插入到细胞外囊泡膜中,从而对其表面进行功能化改造。Koojimans等将细胞外囊泡同DSPE-PEG, DMPE-PEG-maleimide共混,利用DSPE及DMPE的类磷脂结构同细胞外囊泡磷脂层发生疏水相互作用并插入到细胞外囊泡膜中。将靶向EGFR的表面带有巯基的nanobodies同杂化后的细胞外囊泡进行反应,利用巯基-马来酰亚胺反应将nanobodies接枝到细胞外囊泡表面12。由于PEG的修饰,细胞外囊泡体内循环时间被大大延长,且相较于EGFR低表达细胞,带有靶向功能nanobodies的细胞外囊泡对EGFR高表达细胞具有更强的结合能力。Ye等将带有低密度脂蛋白靶向多肽的磷脂结合物同负载有抗癌药物的细胞外囊泡共孵育,得到了能够靶向低密度脂蛋白的载药细胞外囊泡,并将其用于治疗脑胶质瘤13。Cheng等将靶向SARS-CoV-2棘突蛋白的受体结合域(RBD)结合到连接分子DSPE-PEG-NHS上,形成RBD-PEG-DSPE,通过共培养方式将其插入到肺球细胞来源的细胞外囊泡表面,利用电穿孔方式将mRNA疫苗载入细胞外囊泡,形成靶向肺粘膜细胞及肺泡细胞的新型疫苗(图5)14。利用冻干粉方式保存制剂,并通过鼻内给药方式考察疫苗对仓鼠暴露与假病毒后的清除保护效果。
图5. 靶向细胞外囊泡mRNA疫苗制备及给药免疫示意图。
类似于DSPE等磷脂结构分子,固醇类分子也因其可同磷脂膜层发生疏水相互作用而插入细胞外囊泡膜内,被用于锚定功能分子至细胞外囊泡膜表面。Ye等将表面带有胆固醇分子的磁珠用于捕获血清中的细胞外囊泡,之后选用适配体修饰的CuO纳米粒子同捕获后的细胞外囊泡共混,在酸性条件下,CuO氧化为Cu2+离子,在抗坏血酸钠还原作用及聚(胸腺嘧啶)配体作用下,再次形成CuNPs,由于体系中荧光强度同CuNPs浓度呈正相关,由此对细胞外囊泡进行定量检测15。利用疏水相互作用将类磷脂结构分子及固醇类分子插入到细胞外囊泡膜表面具有易于操作,无化学反应试剂,反应条件温和等优势,但同时存在着反应特异性差,反应效率相对较低,结合作用稳定性较差等问题。
近年发现部分多肽具有同膜蛋白分子特定区域的识别结合作用,从而可特异性识别并绑定修饰基团至膜表面。这一发现可改善非共价键膜结合方式特异性较差的问题。Yin等通过噬菌体筛选方式发现了多肽CP05同细胞外囊泡膜蛋白CD63第二细胞外环能够发生特异性结合16。利用多肽-蛋白相互作用方式,可将肌肉靶向多肽M12及PMO同CP05结合并锚定到细胞外囊泡表面,形成可靶向肌肉组织并递送PMO的功能化细胞外囊泡。Wang等通过3D打印技术制备了PCL支架,并将CP05接枝到支架表面用于固定细胞外囊泡,通过电穿孔方式将VEGF plasmids载入到细胞外囊泡中,将此种支架用于大段骨缺损的成骨诱导及血管重塑17。
总结与展望
现有研究表明,细胞外囊泡膜表面功能化修饰可通过多种方式达成,其中化学修饰方式具有可控性高,结构选择性多样化,制备方式简便等优势。需要注意的是,无论是共价键还是非共价键结合方式都存在着一定弊端,特别是对细胞外囊泡膜表面功能位点的影响,会因修饰而导致其结构完整性被破坏,因此,应依据应用场景及改造目的选取合适的修饰方式,或结合不同修饰方式用以达到最佳修饰效率。同时,冻融,超声,挤压及共孵育等物理方式也可同前述的各种化学方式进行结合使用,从而提高修饰效率,提高细胞外囊泡靶向性能及载药能力。
参考文献
[1]Mishra, A.; Singh, P.; Qayoom, I.; Prasad, A.; Kumar, A., Current strategies in tailoring methods for engineered exosomes and future avenues in biomedical applications. Journal of Materials Chemistry B 2021, 9, 6281-6309.
[2]El Andaloussi, S.; Mäger, I.; Breakefield, X. O.; Wood, M. J. A., Extracellular vesicles: biology and emerging therapeutic opportunities. Nature Reviews Drug Discovery 2013, 12, 347-357.
[3]Qi, H.; Liu, C.; Long, L.; Ren, Y.; Zhang, S.; Chang, X.; Qian, X.; Jia, H.; Zhao, J.; Sun, J.; Hou, X.; Yuan, X.; Kang, C., Blood Exosomes Endowed with Magnetic and Targeting Properties for Cancer Therapy. ACS Nano 2016, 10, 3323-3333.
[4]Lin, Q.; Qu, M.; Zhou, B.; Patra, H. K.; Sun, Z.; Luo, Q.; Yang, W.; Wu, Y.; Zhang, Y.; Li, L.; Deng, L.; Wang, L.; Gong, T.; He, Q.; Zhang, L.; Sun, X.; Zhang, Z., Exosome-like nanoplatform modified with targeting ligand improves anti-cancer and anti-inflammation effects of imperialine. Journal of Controlled Release 2019, 311-312, 104-116.
[5]Decuypère, E.; Plougastel, L.; Audisio, D.; Taran, F., Sydnone–alkyne cycloaddition: applications in synthesis and bioconjugation. Chemical Communications 2017, 53, 11515-11527.
[6]Smyth, T.; Petrova, K.; Payton, N. M.; Persaud, I.; Redzic, J. S.; Graner, M. W.; Smith-Jones, P.; Anchordoquy, T. J., Surface Functionalization of Exosomes Using Click Chemistry. Bioconjugate Chemistry 2014, 25, 1777-1784.
[7]Jewett, J. C.; Bertozzi, C. R., Cu-free click cycloaddition reactions in chemical biology. Chemical Society Reviews 2010, 39, 1272-1279.
[8]Tian, T.; Zhang, H.-X.; He, C.-P.; Fan, S.; Zhu, Y.-L.; Qi, C.; Huang, N.-P.; Xiao, Z.-D.; Lu, Z.-H.; Tannous, B. A.; Gao, J., Surface functionalized exosomes as targeted drug delivery vehicles for cerebral ischemia therapy. Biomaterials 2018, 150, 137-149.
[9]Xu, L.; Faruqu, F. N.; Liam-or, R.; Abu Abed, O.; Li, D.; Venner, K.; Errington, R. J.; Summers, H.; Wang, J. T.-W.; Al-Jamal, K. T., Design of experiment (DoE)-driven in vitro and in vivo uptake studies of exosomes for pancreatic cancer delivery enabled by copper-free click chemistry-based labelling. Journal of Extracellular Vesicles 2020, 9, 1779458.
[10]Sun, N.; Lee, Y.-T.; Zhang, R. Y.; Kao, R.; Teng, P.-C.; Yang, Y.; Yang, P.; Wang, J. J.; Smalley, M.; Chen, P.-J.; Kim, M.; Chou, S.-J.; Bao, L.; Wang, J.; Zhang, X.; Qi, D.; Palomique, J.; Nissen, N.; Han, S.-H. B.; Sadeghi, S.; Finn, R. S.; Saab, S.; Busuttil, R. W.; Markovic, D.; Elashoff, D.; Yu, H.-h.; Li, H.; Heaney, A. P.; Posadas, E.; You, S.; Yang, J. D.; Pei, R.; Agopian, V. G.; Tseng, H.-R.; Zhu, Y., Purification of HCC-specific extracellular vesicles on nanosubstrates for early HCC detection by digital scoring. Nature Communications 2020, 11, 4489.
[11]Kwon, S.; Shin, S.; Do, M.; Oh, B. H.; Song, Y.; Bui, V. D.; Lee, E. S.; Jo, D.-G.; Cho, Y. W.; Kim, D.-H.; Park, J. H., Engineering approaches for effective therapeutic applications based on extracellular vesicles. Journal of Controlled Release 2021, 330, 15-30.
[12]Kooijmans, S. A. A.; Fliervoet, L. A. L.; van der Meel, R.; Fens, M. H. A. M.; Heijnen, H. F. G.; van Bergen en Henegouwen, P. M. P.; Vader, P.; Schiffelers, R. M., PEGylated and targeted extracellular vesicles display enhanced cell specificity and circulation time. Journal of Controlled Release 2016, 224, 77-85.
[13]Ye, Z.; Zhang, T.; He, W.; Jin, H.; Liu, C.; Yang, Z.; Ren, J., Methotrexate-Loaded Extracellular Vesicles Functionalized with Therapeutic and Targeted Peptides for the Treatment of Glioblastoma Multiforme. ACS Applied Materials & Interfaces 2018, 10, 12341-12350.
[14]Wang, Z.; Popowski, K. D.; Zhu, D.; de Juan Abad, B. L.; Wang, X.; Liu, M.; Lutz, H.; De Naeyer, N.; DeMarco, C. T.; Denny, T. N.; Dinh, P.-U. C.; Li, Z.; Cheng, K., Exosomes decorated with a recombinant SARS-CoV-2 receptor-binding domain as an inhalable COVID-19 vaccine. Nature Biomedical Engineering 2022, 6, 791-805.
[15]He, F.; Wang, J.; Yin, B.-C.; Ye, B.-C., Quantification of Exosome Based on a Copper-Mediated Signal Amplification Strategy. Analytical Chemistry 2018, 90, 8072-8079.
[16]Gao, X.; Ran, N.; Dong, X.; Zuo, B.; Yang, R.; Zhou, Q.; Moulton Hong, M.; Seow, Y.; Yin, H., Anchor peptide captures, targets, and loads exosomes of diverse origins for diagnostics and therapy. Science Translational Medicine 2018, 10, eaat0195.
[17]Zha, Y.; Li, Y.; Lin, T.; Chen, J.; Zhang, S.; Wang, J., Progenitor cell-derived exosomes endowed with VEGF plasmids enhance osteogenic induction and vascular remodeling in large segmental bone defects.
免责声明:本文旨在传递更多科研资讯及分享,所有其他媒、网来源均注明出处,如涉及版权问题,请作者第一时间后台联系,我们将协调进行处理,所有来稿文责自负,佰乘科学仅作分享平台。转载请注明出处,如原创内容转载需授权,请联系下方邮箱:
欢迎课题组投递成果宣传稿
转载/合作/课题组投稿,联系邮箱:zhongkebaicheng@someslifetech.onmicrosoft.com
撰稿人 | 洪彦航
校稿人 | 洪彦航 赣鹭鹏 左其桑
推送人 | 左其桑
研发创新